Observación Microscópica Muestra
OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA MUESTRA
• La observación microscópica tiene por objetivo:
- Determinar si en el extendido hay bacilos alcohol ácido resistentes (BAAR).
- Establecer el número de estos BAAR.
• Se usa un microscopio con objetivo de 100x de aumento. Antes de usarlo, se debe colocar una gota de aceite de inmersión sobre el extendido.
• En la observación microscópica los BAAR presentan las siguientes
características:
- Son de color rojo fuerte; destacan sobre un fondo azul.
- Tienen forma recta o como bastoncitos delgados, o ligeramente curvos.
- Son muy pequeños (1 - 4 um).
- Son frecuentemente granulosos.
- Se disponen en grupos de 3 - 10 bacilos que asemejan trozos de hilo o parecen formas de letras torcidas (con frecuencia se encuentran cerca de los hilos de fibrina).
• En la observación microscópica los BAAR se pueden confundir con:
- Levaduras, que se tiñen más o menos de rojo. Al calentarlas se rompen y forman grupos de gránulos voluminosos de color rojo.
- Manchas de colorante, cuando el portaobjetos no se ha decolorado adecuadamente.
- No olvidar que otro bacilo patógeno resistente a los ácidos es el bacilo de la lepra.
MÉTODO DE LECTURA
• Es importante tener en cuenta que se considera como campo microscópico útil, aquel en el cual se observa elementos celulares de origen bronquial, es decir leucocitos, fibras mucosas y células ciliadas. Los campos en que no aparezcan dichos elementos no deben considerarse en la lectura. Una vez identificados los campos proceder de la siguiente manera:
1. Observar un mínimo de 100 campos útiles. Hacer un examen completo del primer portaobjetos empleando el objetivo de 100x, avanzando de izquierda a derecha, con iluminación máxima y sin filtro de color.
2. Apuntar el número de bacilos observados y el número de campos
microscópicos útiles a observarse, que variará según la cantidad de bacilos que contenga la muestra.
INFORME DE RESULTADOS DE BAClLOSCOPÍA
• Se informa con la siguiente escala semicuantitativa:
- Negativo: No se encuentran BAAR en 100 campos microscópicos observados.
+ Menos de 1 BAAR por campo, en 100 campos microscópicos observados.
++ 1 a10 BAAR por campo,en 50 campos microscópicos observados.
++++ Más de 10 BAAR por campo, en 20 campos microscópicos observados.
* En caso de encontrar de 1 a 9 BAAR en 100 campos microscópicos
observados, se procederá a:
1. Leer 100 campos más, contabilizando sólo campos microscópicos útiles, en busca de positividad.
2. Si persiste el resultado (1 a 9 BAAR) realizar otro extendido de una porción más representativa de la misma muestra, en búsqueda de positividad y reportar el numero de BAAR observado.
3. Derivar la muestra problema a cultivo para su confirmación bacteriológica.
4. Indicar en el formato de resultados, en "observaciones" , que se está derivando la muestra a cultivo y sugerir el envío de más muestras.
REGISTRO DIARIO DE BACILOSCOPÍA
• Los registros son medios prácticos para obtener información que ayudan en las actividades de vigilancia, supervisión y evaluación del Programa Nacional de Control de Tuberculosis.
• Ofrece información necesaria para preparar los informes mensuales y trimestrales sobre detección y control de casos de tuberculosis.
• El personal que realiza las baciloscopías estará obligado, bajo responsabilidad, a llevar el registro diario de las baciloscopías efectuadas y velar por la integridad y puesta al día de la información.
• Para ello se requiere un libro donde se consigna una numeración correlativa anual. Se empezará anualmente el 2 de enero y terminara el 31 de diciembre del mismo año, desde el numero 1 hasta el último correspondiente.
• Para el consolidado mensual y trimestral debera llenarse una hoja ad hoc, conforme lo establece la "Doctrina de Normas y Procedimientos para el Control de la Tuberculosis en el Peru. 1995".
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.
bacteriológico, BAAR, confirmación, tuberculosis
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Coloración del extendido
• El bacilo de la tuberculosis Mycobacterium tuberculosis, es resistente a los ácidos, es decir, una vez teñidos de rojo con fucsina básica fenicada, no se pueden decolorar por medio de ácidos o etanol.
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