PRINCIPIOS GENERALES
• La densidad de los parásitos es el número de parásitos que se cuentan en cada campo microscópico.
• Generalmente se determina la densidad parasitaria en la gota gruesa.
• Es importante notificar la densidad de los parásitos por estadíos en caso de P. falciparum (estadios asexuados y sexuados), los cuales se asocian a enfermedad más grave, que algunas veces causa la muerte.
• La determinación de la densidad parasitaria es útil para conocer la gravedad de la malaria y para conocer la respuesta al tratamiento antimalárico. Si el tratamiento es eficaz, la densidad parasitaria en la sangre debe disminuir progresivamente.
 
MÉTODO
a. Métodos de determinación de la densidad parasitaria
 
EL SISTEMA DE CRUCES (+) O MÉTODO SIMPLE
• Es un método sencillo para determinar el número de parásitos en gota gruesa, usado rutinariamente.
• Se observan 100 campos microscópicos, vistos con un aumento de 750x. Una muestra de gota gruesa corresponde aproximadamente a 0,2 ul de sangre. Por lo tanto, si encontramos 1 parásito por campo microscópico, en 1 ul tendremos: (100 x 1) X 5 = 500 parásitos.
• Si luego de leer 100 campos microscópicos se observan menos de 40 parásitos (1 a 39) se determina el número exacto de parásitos.
• Cuando se encuentra más de 40 parásitos en 100 campos microscópicos se usa cruces, de la siguiente manera:
  +/2    De 40 a 60 parásitos en 100 campos. 
  +       Un parasito por campo en 100 campos. 
  ++     De 2 a 20 parásitos por campo en 100 campos. 
  +++   De 21 a 200 parásitos por campo en 100 campos. 
  ++++ Más de 200 parásitos por campo en 100 campos.  
 
PARÁSITOS POR MICROLITRO DE SANGRE
• Es un método práctico y de precisión aceptable.
• El número de parásitos por microlítro de sangre en gota gruesa es contado en relación con el número estándar de leucocitos (8 000).
• A pesar de que hay variaciones en el número de leucocitos entre personas sanas y enfermas, este método permite una precisión aceptable.
• Se requiere de dos contadores: uno para los parásitos y otro para los leucocitos.
• Si después de contar 200 leucocitos, se han encontrado 10 o más parásitos se debe anotar los resultados en función del número de parásitos por 200 leucocitos.
Ejemplo: 11 parásitos por 200 leucocitos.
• Si después de contar 200 leucocitos, hay 9 o menos parásitos, continuar
contando hasta llegar a 500 leucocitos en su contador, luego anotar el número
de parásitos por 500 leucocitos.
Ejemplo: 7 parásitos por 500 leucocitos.
• Para informar los resultados por microlitro de sangre, se debe usar la siguiente
fórmula:
                            N° de parásitos x 8 000
Parásitos por ml = ----------------------------
                                N° de leucocitos
Esto significa que:
 
- Si son contados 200 leucocitos, entonces:
                            N° de parásitos x 8 000
Parásitos por ml = ----------------------------
                                           200
Parásitos por ml = N° de parásitos x 40
 
- Si son contados 500 leucocitos, entonces:
                            N° de parásitos x 8 000
Parásitos por ml = ----------------------------
                                          500
Parásitos por ml = N° de parásitos x 16
 
b. En caso de Plasmodium falciparum
• Cuando la infección es por Plasmodium falciparum, ademas de la densidad
parasitaria se debe registrar las fases de desarrollo:
F        = Anillos solamente.
F y Fg = Anillos y gametos.
Fg       = Gametos solamente.
• Cuando se detecta un caso positivo a Plasmodium falciparum, debe ser reportado al jefe inmediato y realizar un seguimiento o control tomando muestras como mínimo durante 7 días consecutivos. Si al paciente se le puede seguir observando por más tiempo, se debe tomar 2 muestras semanal la segunda, tercera y cuarta semanas.
• Para garantizar el diagnóstico en el seguimiento o evolución de un caso Plasmodium falciparum, se debe observar como mínimo 300 campos microscópicos con la finalidad de observar cualquier signo de resistencia en recrudescencia (nueva aparición de los parásitos).
• En caso de seguimiento a Plasmodium falciparum, se identificara la muestra con la clave original (primera muestra), en todas las laminas que se tomen, agregándose un número correlativo para cada una de ellas.
Ejemplo:
Clave original: (150) 10
Claves de seguimiento: (150) 10 - 1,
(150) 10 - 2,
(150) 10 - 3, etc.
No olvidar adicionar la fecha de toma de muestra en cada muestra de sangre.
 
Fuente: Procedimientos de Laboratorio. Ministerio de Salud. INS. Perú.

Identificación Bacterias

: 10 + 2 =